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Acta Botánica Cubana, Vol. 220 (enero-diciembre 2021)
 
LISTA DE ESPECIES
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The fungal dimension of biodiversity: magnitude, significance, and conservation. Mycological Research. 95: 641-655. , 2001)Hawksworth DL. 2001. The magnitude of fungal diversity: the 1.5 million species estimate revised. Mycological Research. 105: 1422-1432. y Blackwell (2011)Blackwell M. 2011. The fungi: 1, 2, 3 … 5.1 million species? American Journal of Botany. 98: 426-438. consideran que a nivel mundial deben existir aproximadamente entre 1.5 y 5.1 millones de especies. Sin embargo, Hawksworth (2012)Hawksworth DL. 2012. Global species numbers of fungi: are tropical studies and molecular approaches contributing to a more robust estimate? Biodiversity and Conservation. 21: 2425-2433. sitúa esta cifra en unos 3 millones de hongos, de los que solo se conocen alrededor de 100 000, lo que representa el 3.3% del total estimado. Según datos de la Estrategia para la Conservación de la Diversidad Fúngica en Cuba (Mena-Portales et al., 2003Mena-Portales J, Herrera S, Mercado A, Minter DW, Iglesias H, Blanco N, Ortiz JL, Maldonado S, Recio G, Rodríguez M, Camino M. 2003. Estrategia para la conservación de la diversidad fúngica en Cuba. En: Memoria de IV Convención Internacional de Medioambiente y Desarrollo. La Habana. ), el estado de conocimiento de los hongos se encuentra en un “punto crítico”, lo cual también se expone en el reporte sobre la Diversidad biológica cubana (Centro Nacional de Biodiversidad, 2009Centro Nacional de Biodiversidad. 2009. Diversidad Biológica Cubana. Disponible en http://www.ecosis.cu/cenbio/diversidadbiotacubana.htm (consultado: 10 agosto de 2018).).

La selección de la Ciénaga de Zapata como área de estudio de la micobiota se corresponde también con las metas y objetivos de la Estrategia para la Conservación de la Diversidad Fúngica en Cuba (Mena-Portales et al., 2003Mena-Portales J, Herrera S, Mercado A, Minter DW, Iglesias H, Blanco N, Ortiz JL, Maldonado S, Recio G, Rodríguez M, Camino M. 2003. Estrategia para la conservación de la diversidad fúngica en Cuba. En: Memoria de IV Convención Internacional de Medioambiente y Desarrollo. La Habana. ), al incluirse entre los ecosistemas priorizados por constituir una zona ecológicamente sensible y amenazada. La Ciénaga de Zapata es el humedal más grande y mejor conservado de Cuba y de todo el Caribe insular; con una extensión de 628 171 ha de superficie que incluye la zona marina que lo circunda, está situada en el occidente de Cuba, al sur de la provincia de Matanzas, ocupando la Península de Zapata. Por su parte, el Sistema Nacional de Áreas Protegidas (SNAP) identifica los pastos marinos y los manglares como ecosistemas cársicos mejor representados dentro del humedal y reconoce además, la inclusión de otros ecosistemas afines como herbazal de ciénaga, bosque de ciénaga y bosque semideciduo con humedad fluctuante (Centro Nacional de Áreas Protegidas, 2002Centro Nacional de Áreas Protegidas. 2002. Sistema Nacional de Áreas Protegidas. Cuba. Plan 2003-2008. Escandón Impresores, Sevilla.; 2009)Centro Nacional de Áreas Protegidas. 2009. Sistema Nacional de Áreas Protegidas. Cuba. Plan del sistema nacional de áreas protegidas 2009-2013. La Habana., que constituyen el hábitat de un amplio número de organismos, muchos de ellos endémicos y amenazados, y son propicios para el desarrollo de hongos y Myxomycetes.

Este humedal fue declarado por la UNESCO en el año 2000 como Reserva de la Biosfera en el contexto del programa “Man and Biosphere” (MAB). Además, es sitio RAMSAR, designación otorgada en el 2001 por la Convención sobre Humedales de Importancia Internacional. Como parte del Sistema Nacional de Áreas Protegidas (SNAP) está categorizada como Área Protegida de Recursos Manejados (APRM) que incluye entre sus áreas núcleos el Parque Nacional Ciénaga de Zapata y el Refugio de Fauna “La Salina” (Castañeira et al., 2004Castañeira MA, Perera A, Aguilar S, Ruiz PJ. 2004. Áreas protegidas de Cuba con reconocimiento internacional. En: González A, Castañeira MA (eds.), Áreas Protegidas de Cuba, 41-56, Centro Nacional de Áreas Protegidas, La Habana. ; Centro Nacional de Áreas Protegidas, 2013Centro Nacional de Áreas Protegidas. 2013. Plan del Sistema Nacional de Áreas Protegidas 2014-2020. Ministerio de Ciencia, Tecnología y Medio Ambiente, La Habana. ; Ruiz, 2017Ruiz I. 2017. Las Áreas Protegidas de Cuba. Centro Nacional de Áreas Protegidas, La Habana).

Como primeros antecedentes del estudio de la micobiota en la Ciénaga de Zapata se pueden mencionar los artículos de Holubová-Jechová (1982Holubová-Jechová V. 1982. New or interesting phialidic hyphomycetes from Cuba. Mycotaxon. 15: 277-279., 1983)Holubová-Jechová V. 1983. Studies of Hyphomycetes from Cuba I. Ceská Mykologie. 37: 12-18.. A partir de material proveniente de recolectas esporádicas realizadas por otros micólogos se realizaron aportes puntuales por parte de Castañeda (1986Castañeda Ruiz RF. 1986. Deuteromycotina de Cuba. Hyphomycetes IV. Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical “Alejandro de Humboldt”, La Habana., 1988)Castañeda Ruiz RF. 1988. Fungi Cubense III. Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical “Alejandro de Humboldt”, La Habana., Holubová-Jechová y Castañeda (1986)Holubová-Jechová V, Castañeda Ruiz RF. 1986. Studies on Hyphomycetes from Cuba III. New and interesting dematiaceous taxa from leaf litter. Ceská Mykologie. 40: 74-85., Castañeda y Rodríguez (1988)Castañeda Ruíz RF, Rodríguez de la Rosa N. 1988. Notas acerca del género Fusarium en Cuba. I. Revista del Jardín Botánico Nacional. 9: 89-97., Castañeda y Kendrick (1990aCastañeda Ruiz RF, Kendrick B. 1990a. Conidial fungi from Cuba: I. University of Waterloo Biology Series. 32: 1-53., bCastañeda Ruiz RF, Kendrick B. 1990b. Conidial fungi from Cuba: II. University of Waterloo Biology Series. 33: 1-61.; 1991)Castañeda Ruiz RF, Kendrick B. 1991. Ninety-nine Conidial Fungi from Cuba and three from Canada. University of Waterloo Biology Series. 35: 1-132., Castañeda et al. (1998)Castañeda Ruíz RF, Guarro J, Mayayo E, Decock C. 1998. Notes on conidial fungi. XVI. New species of Dendryphiosphaera and some new records from Cuba. Mycotaxon. 67: 9-19. y Delgado-Rodríguez et al. (2007)Delgado-Rodríguez G, Mercado-Sierra A, Mena-Portales J, Guarro J. 2007. Hemicorynespora clavata sp. nov., a new Hyphomycete (Mitosporic fungi) from Cuba. Cryptogamie Mycologie. 28: 65-69.. Otras contribuciones están enfocados específicamente al área de estudio (Mercado-Sierra et al., 2002Mercado-Sierra A, Delgado-Rodríguez G, Mena-Portales J, Guarro J. 2002. Some hyphomycetes (Mitosporic Fungi) from “Ciénaga de Zapata” Biosphere Reserve (Cuba). Boletín de la Sociedad Micológica de Madrid. 26: 183-188.; Aloy-La Rosa y Mena-Portales 2005Aloy-La Rosa M, Mena-Portales J. 2005. Hifomicetes de la Reserva de la Biosfera Ciénaga de Zapata, Cuba. En: Memorias del IX Encuentro de Botánica “Johannes Bisse In Memoriam”. CDR 959-18-0005-3.; Cantillo-Pérez et al., 2014Cantillo-Pérez T, Mena-Portales J, Jiménez-Gómez I. 2014. Nuevos registros de Hifomicetes de la Ciénaga de Zapata, Cuba. Boletín de la Sociedad Micológica de Madrid. 38: 3-8. ; Mena-Portales et al., 2018Mena-Portales J, Cantillo-Pérez T, Jiménez-Gómez I. 2018. Hifomicetes de la Reserva de la Biosfera “Ciénaga de Zapata”, Cuba. Acta Botánica Cubana. 217: 96-108.). En cuanto a Myxomycetes, los antecedentes en el área de estudio se restringen solo a dos especies del género Arcyria Hill ex F.H. Wigg. referidas por Camino y Pérez (2000)Camino M, Pérez JM. 2000. El género Arcyria Wiggers (Trichiales- Myxomycetes) en Cuba. Revista del Jardín Botánico Nacional. 21: 115-126.. Estados asexuales de Ascomycota marinos son citados por Enríquez et al. (2009)Enríquez D, González M, Delgado Y, Núñez R. 2009. Micobiota marina de la Ciénaga de Zapata, Cuba. Revista de Investigaciones Marinas. 30: 93-97..

El conocimiento de la diversidad fúngica en la Ciénaga de Zapata es pobre si se compara con el que se tiene en otras áreas similares y en relación con plantas u otros grupos de organismos. El presente trabajo tiene como objetivo brindar una relación actualizada de las especies fúngicas de representantes de los hifomicetes (estados asexuales de Ascomycota) y Myxomycetes, lo cual servirá de base a futuras investigaciones básicas y aplicadas relacionadas con la micobiota cubana y con los temas de conservación.

MATERIALES Y MÉTODOS

La lista se conformó a partir de la revisión de los materiales recolectados por los autores, la información contenida en la literatura micológica y en la Base de Datos “Hongos de Cuba” (Camino et al., 2006Camino M, Mena-Portales J, Minter DW. 2006. Hongos de Cuba. Versión 1.00. Disponible en http: www.cybertruffle.org.uk/cubafung (consultado: 4 agosto de 2021).). Para la determinación de las especies se consultó la bibliografía especializada de cada grupo. La actualización nomenclatural de las especies se realizó según los criterios del Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/) y Mycobank (http://www.mycobank.org/), para los mixomicetes se consultó el sitio (nomen.eumycetozoa.com) creado por Lado (2005-2018)Lado C. 2005-2018. An on line nomenclatural information system of Eumycetozoa. Real Jardín Botánico, CSIC. Madrid, Spain. Disponible en http://www.nomen.eumycetozoa.com (consultado: 31 julio 2018)..

Las especies de Myxomycetes señaladas con un asterisco corresponden a nuevos registros para el área de estudio (Anexo 1). En la lista de hifomicetes se incorporó la sinonimia de especies que tienen como nombre válido el de su estado sexual o ascígero, en estos casos se agregó el nombre del estado asexual en el que se basó la determinación. Además, se incluyó la sinonimia de especies que han sido ubicadas en varios géneros de hifomicetes y son ampliamente conocidos por esos nombres o donde la nueva combinación es muy reciente.

RESULTADOS

Se compilaron 177 especies, 155 pertenecen a hifomicetes y 22 a representantes de Myxomycetes, que se corresponden a 125 géneros en total (Anexo 1). Se registran 20 especies de Myxomycetes como nuevos hallazgos para el área de estudio.

De los táxones de hifomicetes relacionados en publicaciones previas, uno se describió como nuevo género para la ciencia: Solicorynespora R.F. Castañeda & W.B. Kendr. y 15 como nuevas especies: Anungitea palustri R.F. Castañeda & W.B. Kendr., Brocchiosphaera microspora (R.F. Castañeda & W.B. Kendr.) K. Yamag., Chuaseehar. & Nakagiri (como Candelabrum microsporum R.F. Castañeda & W.B. Kendr.), Cylindrosympodium trise<LD$(tx$HD$(HHHu!HL$8H1!$H@^HD$(1HH@tVWH(Loft*f=oft*f=oft*f=oft *f=tyoft*f=tkoft*f=t]@1&HV1HHc@H<HH@Ht1H>H(_^HV1HV1HV1HV1HV1VH HHA HtH ^HqHA HoH~91AWAVVWUSHDDAHH=H1H$H =HHwHt HHHx.1HD$hHD$`DHHHH@Ht1HG H|$`HS9H 4b1HHpHxH|$pHG8H1E1IHO8HxH$H11HL$`H~HHL$hHH$H1Y!Hĸ[]_^A^A_H =H=Dt$ L/HI#AAum=u-g=E1Lt$pM>HL$hL9l$(\$ @LAHD$`L8H`HM6LBHLDL|$PHD$H@l$@@l$8WD$(\$ LAeH\$hHtHH@HtMDIH@L/1.HH@Hs4H9HH@ saHH@spHH@HsdHH@s`MtIH@Lrs1AWAVVWUSHDDAHH<H1H$H =HHwHt HHHx.1HD$hHD$`DHHHH@Hs1HG H|$`HS9H d_1HHpHxH|$pHG8H1E1IHO8HxH$H11HL$`H{HHL$hHH$H1YHĸ[]_^A^A_H =H=Dt$ LT/HI#AAum=u-g=E1HT$hL:Lt$pM>l$(\$ @LAHD$`L8M6H`HLAHLDL|$PHD$H@l$@@l$8WD$(\$ LE1bH\$hHtHH@HsMGIH@L211HH@Hs7H9HH@ sdHH@ssHH@HsgHH@scMtIH@Lus1 VWSH0HH-=HtXHtH}`GH߸HHH@HsHHH@Ps1H0[_^H =H=LN|$ LHHAVVWSH8HHH"<H1HD$0HD$(Mun1LL9HtHH@H]sHpHpHt HH@=sLd9Hu4HL$0H1b1H8[_^A^Ht$(HHflH6HyHH@HsH(HtHHHH1H(øWVWSH HHHH9HHu'HÈHH1H9H [_^ÿ@VWH(H΃tHH H1H(_^H=Ht9HtH|ًHL$ Lu"HI.H =pH=VWH(H΃tHHƐH1H(_^Hj=Ht9HtH|ًHL$ L@"HI螬H =H=VWSH HHHH;9HxHtHH@HsHH91H [_^AVVWSHHHHHR<H1HD$@HD$0߯GeH %XHEGeH %XHHHuB1Lt$8ILIHIHt"HH@HܴH9HI8Lt$0H1IMHH;9IHtHH@HsHhHhHt HH@sH =HHt HH9HL$0Ht HH@sHL$@H11HH[_^A^{s>HA8HHYs7 H  =H =gHhLxHL$ L.H[LAVVWSH8HHHr<H1HD$0HH9XLHMtHPHHȆ9D$ HT$/LAAu9y t9=uH9HHv9HL$0H1y1H8[_^A^HT9HC9VWH(HH =HtHtH}!wx1H(_^H =tH =LOt$ L,H̉1̈1VWSHPHq8tsHτt']hsH =HHt HH1HP[_^H =H61HtߋH|H bYH+HEHT$ L!HIH x =;Ht =bH`h H HYILDDDDHDLD$@DL$8DT$0D\$(HT$ L~!HIqH =HttHtH}H`\ H`` H`d uH =FH =H k =.Hg =tLHA軦eAVVWSHHHϸ WD=Hw9DuH`d H=HHt HLL9XHHHHPLƂ9DDD$ H0!L9HL9HH[_^A^D9H =H1HtЋA|ȋT$(D$ L;t!I?L9L9WyH =eH=DL L!VMDщL$8DD$0T$(LT$ LtHI贤H 0=HH)=̊A|1̊1̊1̋1̋1̈Q1̊1VWH(HyHqHuH0H0HuH(_^HH@HsHH@HsH(_^HVWSH HHIHu%H~HtHO8t$t;HH [_^H%N9HH@)sHG8HH&9H [_^VWH(HyHqHuH(H(HuH(_^HH@HsHH@HsH(_^HVH HHA8HuHHA8yH91H ^AVVWUSH0DHHH&=HvHt xfF fr"t%fF H1mF tt%fF H1CH(H}9fFH~9f~ H0[]_^A^Ã`HPx\xLx`L5P1m(1Hىj9HPL(+eH8Hx(Q D?1w3fF 3H =[H=rωL$ Lb/HI^He=HHt HFKx\t-H2=HHt HF@xLu̓x`uFuA pk9 D$(4D$ 30A1A2Qj9῁u[fF H(H{9Hx( ?m=u$t~`t j96F'~`HKD= KEȉNH=HHHH%H /y9H̹H=%H y9H̹HQ>%H x9H̹ŧH]+(H x9H̹/詧AWAVAUATVWSHpHIH <H1HD$hL%}.-H\$8LcILkL#LkH|$HL'LoLgLoHQ HL$(5pIV0H)pA~`D$THL$Ht|Ld$HD$PfD$TL|$XA~aD$dHL$XQYLd$XD$`fD$dHR'L&LnLt$(HLoHNLfLnHoHN Lf Ln(HkoHN0Lf0Ln8LWodžAFH(_^H31H31H31HIHtHH@LYsI1HIHtHH@ L 9sI1VWH8LDD$pH<H1HD$0HILa distribución de la especie en Cuba se concentra en cinco provincias: Artemisa (antigua La Habana), Camagüey (Camino, 1998Camino M. 1998. Los Myxomycetes del Hoyo de Bonet, Sierra de Cubitas, Camagüey. Revista del Jardín Botánico Nacional. 19: 161-162.), Cienfuegos, La Habana (antigua Cuidad de La Habana), Pinar del Río (Camino y Pérez 2000Camino M, Pérez JM. 2000. El género Arcyria Wiggers (Trichiales- Myxomycetes) en Cuba. Revista del Jardín Botánico Nacional. 21: 115-126.). También citada por Farr (1976Farr ML. 1976. Myxomycetes. Flora Neotropica 16. Cramer, New York. ) de Guantánamo como A. oerstedtii (Camino et al., 2005Camino M, Moreno G, Castillo A. 2005. Taxonomic revision of the myxomycetes from Cuba deposited in the Farlow Herbarium (USA). Mycotaxon. 93: 379-400. ). En el Caribe insular se menciona para Dominica (Minter et al., 2002Minter DW, Mena Portales J, Rodríguez Hernández M, Iglesias Brito H, Camino Vilaró M, Mercado Sierra A. 2002. Mapas de Distribución Computarizados de los Hongos del Caribe. Disponible en www.biodiversity.ac.psiweb.com/carimaps/indexe.htm (consultado: 23 julio 2021).). Esta especie fue evaluada en el 2007 con categoría “en peligro” (Mena et al., 2012Mena-Portales J, Blanco Hernández N, Camino Vilaró M, Herrera Figueroa S, Cabarroi Hernández M, Ortiz Medina JL, Maldonado González S, Recio Herrera G, Enríquez Lavandera D, Minter DW, González Fraginal G, Pons Penabad R. 2012. Lista roja de micobiota cubana. Disponible en http://repositorio.geotech.cu/jspui/handle/1234/1323 (consultado: 23 julio 2021).) según los criterios de la IUCN (IUCN, 2001IUCN 2001. IUCN Red List Categories and Criteria: Version 3.1. IUCN Species Survival Commission. IUCN, Gland and Cambridge.).

Otra especie curiosa es Dictydiaethalium plumbeum (Schumach.) Rostaf. ex Lister que se caracteriza por la presencia de un pseudoetalio aplanado y de color pardo amarillento, como en los especímenes anteriores estudiados. Se registra para Cuba en las provincias Pinar del Río y Sancti Spíritus (Camino et al., 2008Camino M, Moreno G, Castillo A, Mitchell DW, Minter DW. 2008. Additions to the myxomycete biota of Cuba.1. Mycotaxon. 106: 75-102.). En el Caribe insular está presente en Islas Vírgenes, Puerto Rico y República Dominicana (Minter et al., 2002Minter DW, Mena Portales J, Rodríguez Hernández M, Iglesias Brito H, Camino Vilaró M, Mercado Sierra A. 2002. Mapas de Distribución Computarizados de los Hongos del Caribe. Disponible en

AGRADECIMIENTOS

Los resultados de Myxomycetes presentados tributaron al proyecto “Diversidad y conservación de hongos en tres humedales cubanos” (2016-2018). Se reconoce también el apoyo brindado por el proyecto “Implementación de la Estrategia de Conservación de la Diversidad Fúngica en Cuba” (2019-2021) para la recopilación de la información y la confección de la lista de especies. Ambos proyectos pertenecen al Programa de Ciencia, Tecnología e Innovación “Uso sostenible de los componentes de la Diversidad Biológica en Cuba” de la Agencia de Medio Ambiente (AMA). Los autores agradecen a los técnicos Margit Clavel Calzado y Yaranai Reina Meriño por el procesamiento del material recolectado.

 

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Anexo 1.  Táxones registrados de hifomicetes (estados asexuales de Ascomycota) y Myxomycetes en la Ciénaga de Zapata, Cuba.
Appendix 1.  Recorded taxa of hyphomycetes (asexual states of Ascomycota) and Myxomycetes in the Ciénaga de Zapata, Cuba.
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Estados asexuales de Ascomycota
Acrodictys bambusicola M.B. Ellis, Mycol. Pap. 79: 6 (1961)
Acrogenospora sphaerocephala (Berk. & Broome) M.B. Ellis, Dematiaceous Hyphomycetes (Kew): 114 (1971)
Anungitea palustri R.F. Castañeda & W.B. Kendr., Univ. Waterloo Biol. Ser. 35: 10 (1991)
Anungitea uniseptata Matsushima, Icon. microfung. Matsush. lect. (Kobe): 8 (1975)
Ardhachandra selenoides (de Hoog) Subram. & Sudha, Can. J. Bot. 56(7): 731 (1978)
Arthrobotrys superbus Corda [as 'superba'], Pracht-Fl. Eur. Schimmelbild. 43 (1839)
Ascotricha chartarum Berk., Ann. nat. Hist., Mag. Zool. Bot. Geol. 1: 257 (1838) = Dicyma ampullifera Boulanger, Rev. gén. Bot. 9: 18 (1897)
Bactrodesmium linderi (J.L. Crane & Shearer) M.E. Palm & E.L. Stewart, Mycotaxon 15: 319 (1982)
Beltrania rhombica Penz., Michelia 2 (no. 8): 474 (1882)
Beltraniella clara Onofri, Mycotaxon 17: 242 (1983)
Beltraniella havanensis (Hol.-Jech.) Matsush. Matsush. Mycol. Mem. 5: 5 (1987)
Beltraniella portoricensis (F. Stevens) Piroz. & S.D. Patil, Can. J. Bot. 48(3): 575 (1970)
Beltraniopsis esenbeckiae Bat. & J.L. Bezerra, Publicações Inst. Micol. Recife 296: 7 (1960)
Biscogniauxia mediterranea (De Not.) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig). 2: 398 (1891) = Hypoxylon mediterraneum (De Not.) Ces. & De Not., Comm. Soc. crittog. Ital. 1(fasc. 4): 202 (1863)
Brachysporiella gayana Bat., in Batista & Vital, Bol. Secr. Agric. (Pernambuco). 19(1-2): 109 (1952)
Brocchiosphaera microspora (R.F. Castañeda & W.B. Kendr.) K. Yamag., Chuaseehar. & Nakagiri, in Yamaguchi, Chuaseeharonnachai, Tsurumi, Sri-Indrasutdhi, Boonyuen, Suzuki, Okane & Nakagiri, Mycoscience 61(6): 279 (2020) = Candelabrum microsporum R.F. Castafieda & W.B. Kendr., Univ. Waterloo Biol. Ser. 35: 16 (1991)
Canalisporium caribense (Hol.-Jech. & Mercado) Nawawi & Kuthub., Mycotaxon 34(2): 479 (1989)
Ceratosporella ponapensis Matsush., Matsush. Mycol. Mem. 2: 3 (1981)
Chalara brevispora Nag Raj & W.B. Kendr., Monogr. Chalara Allied Genera (Waterloo): 97 (1975)
Chloridium codinaeoides Piroz., Mycol. Pap. 129: 8 (1972)
Chloridium lignicola (F. Mangenot) W. Gams & Hol.-Jech., Stud. Mycol. 13: 37 (1976)
Circinotrichum maculiforme Nees, Syst. Pilze (Würzburg): 19 (1816) [1816-17]
Cladosporium cladosporioides (Fresen.) G.A. de Vries, Contrib. Knowledge of the Genus Cladosporium Link ex Fries: 57 (1952)
Cladosporium oxysporum Berk. & M.A. Curtis, in Berkeley, J. Linn. Soc., Bot. 10 (no. 46): 362 (1868) [1869]
Cochliobolus geniculatus R.R. Nelson, Mycologia 56: 778 (1964) = Curvularia geniculata (Tracy & Earle) Boedijn, Bull. Jard. bot. Buitenz, 3 Sér. 13(1): 129 (1933)
Corollospora ramulosa (Meyers & Kohlm.) E.B.G. Jones & Abdel-Wahab, in Réblová et al., IMA Fungus 7(1): 137 (2016) = Varicosporina ramulosa Meyers & Kohlm., Can. J. Bot. 43: 916 (1965)
Corynespora cassiicola (Berk. & M.A. Curtis) C.T. Wei, Mycol. Pap. 34: 5 (1950)
Corynespora vismiae M.B. Ellis, Mycol. Pap. 93: 28 (1963)
Curvularia fallax Boedijn, Bull. Jard. bot. Buitenz, 3 Sér. 13(1): 129 (1933)
Curvularia hawaiiensis (Bugnic. ex M.B. Ellis) Manamgoda, L. Cai & K.D. Hyde, in Manamgoda, Cai, McKenzie, Crous, Madrid, Chukeatirote, Shivas, Tan & Hyde, Fungal Diversity. 56(1): 141 (2012)
Curvularia lunata (Wakker) Boedijn, Bull. Jard. bot. Buitenz, 3 Sér. 13(1): 127 (1933)
Curvularia pallescens Boedijn, Bull. Jard. bot. Buitenz, 3 Sér. 13(1): 127 (1933)
Curvularia trifolii (Kauffman) Boedijn, Bull. Jard. bot. Buitenz, 3 Sér. 13(1): 128 (1933)
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Recibido: 30/08/2021

Aceptado: 29/10/2021

 
 

CONTRIBUCIÓN DE LOS AUTORES: MCV y JMP participaron en la recolecta del material de estudio, actualización de nombres, búsqueda de datos y redacción de la primera versión del documento. TCP, LCH y YAH recolectaron material y realizaron búsqueda de datos. IJG participó en la recolecta e identificación de muestras. Todos los autores contribuyeron a la revisión crítica del manuscrito

 

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